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熒光素酶檢測技術(shù)(Luciferase)實(shí)驗流程

熒光素酶報告基因檢測法是轉錄調控研究中十分重要的實(shí)驗手段。但其結果往往存在一定的誤差。為解決這一問(wèn)題,現普遍采用雙熒光素酶報告基因檢測法。在雙熒光素酶報告基因測試中,將螢火蟲(chóng)熒光素酶作為實(shí)驗報告基因,海腎熒光素酶作為對照報告基因。實(shí)驗報告基因用于測試實(shí)驗條件下基因的表達,而對照報告基因作為內對照,以使實(shí)驗報告基因測試的結果歸一化。作歸一化可消除實(shí)驗過(guò)程中減弱實(shí)驗準確度的變化,如培養細胞的數量、細胞轉染及裂解的效率等。在研究轉錄調控啟動(dòng)子活性中,具體實(shí)驗步驟如下。

1 質(zhì)粒轉染細胞

1.1 細胞鋪板:將細胞按70%的匯合度接種到96孔板。

1.2 轉染:16h后轉染螢光素酶報告基因質(zhì)粒和RNA,每個(gè)樣品設置6個(gè)復孔

1)配制DNA和轉染試劑: 96孔板轉染質(zhì)粒時(shí)每孔比例為pLentiFireflyRenilla:轉染試劑=0.2μg0.1μg0.01μg0.25μL

2)稀釋好DNA及轉染試劑,常溫孵育5min

3)將稀釋好的DNA分別和轉染試劑混勻,常溫孵育20min

4)每孔棄去15μL培養基,將15μL DNA轉染混合液添加到每孔細胞樣品中

5)轉染6h后,換新鮮完全培養基

2 雙報告基因檢測

1)質(zhì)粒共轉染48h后,棄去培養基,用100μL 1XPBS1

2)傾斜96孔板,吸干剩余的PBS

3)去離子水將5XPLB稀釋成1XPLB,使用前放到常溫

4)每孔加50μL稀釋好的1X PLB,搖床常溫條件下?lián)u15min,進(jìn)行裂解

5)白色不透光的96孔酶標板中每孔加步驟4的上清液10μL,加入100μL預先混好的LAR II,2s后測數據

6)每孔添加100μL預先混好的Stop&Glo Reagent,靜止2s后,測數據

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